作者:都红蕾,孙奋勇,陈勍,潘秋辉
【摘要】 目的 观察肝细胞生长因子(HGF)对子宫内膜癌细胞HEC2B增殖的影响及子宫内膜癌细胞HEC2B中HGF受体Cmet的表达,了解HGF对子宫内膜癌细胞的作用及其机制。方法 体外培养人子宫内膜癌细胞HEC2B,用RTPCR的方法检测HEC2B中HGF受体Cmet有表达。对HEC2B进行24 h血清饥饿后用不同剂量的HGF作用于HEC2B。用四甲基偶氮唑盐微量酶反应比色法(MTT法)分析细胞的增殖力,用流式细胞仪检测细胞的增殖周期。结果 Cmet在HEC2B细胞中稳定表达,HGF促进细胞的增殖,并在一定的范围内有剂量依赖关系,各处理组与对照组相比,P<0.05。当HGF浓度达到60 ng· mL-1时,增殖水平较对照上调约1.9倍。结论 HGF/Cmet能够在体外促进子宫内膜癌细胞的增殖。
【关键词】 子宫内膜癌细胞;肝细胞生长因子;肝细胞生长因子受体
Abstract:Objective To study the effects of hepatocyte growth factor on endometrial cancer cells, detect the alterations of cell proliferation and expression level of HGF receptor Cmet and understand the molecular mechanism. Methods Endometrial cancer cell line, HEC2B was cultured in vitro. The expression level of Cmet in HEC2B was determined with RTPCR. HEC2B was treated with HGF at different doses. Cell proliferation was analyzed with MTT assay. Cell cycle distribution was examined with FACS. Statistical evaluations were conducted using ttest. Results Cmet was expressed in HEC2B cells. Compared with controls, HGF could promoted the proliferation of HEC2B in a dosedependent manner (P<0.05). Treatment with 60 ng· mL-1 HGF increased the proliferation level by 1.9 fold. Conclusion Cmet was expressed stably in HEC2B cells. HGF/Cmet system promoted the formation, development and proliferation of endometrial cancer cells in vitro.
Key words:endometrial cancer cell; hepatocyte growth factor; hepatocyte growth factor receptor
子宫内膜癌是女性生殖道常见三大恶性肿瘤之一,近20年来在世界范围内子宫内膜癌发病率有上升趋势。肝细胞生长因子(HGF)是一个多功能生长因子。HGF的单一受体Cmet是一跨膜蛋白,由原癌基因Cmet编码。在许多恶性肿瘤中Cmet被过表达[1-6]。HGF/Cmet与子宫内膜癌的关系却鲜有报道。本研究通过观察子宫内膜癌细胞中Cmet的表达及HGF对子宫内膜癌细胞的作用,旨在为临床以HGF/Cmet为靶点治疗子宫内膜癌提供理论基础。
1 材料与方法
1.1 试剂与细胞株
子宫内膜癌细胞株HEC2,购自中科院细胞库;RNase、胰蛋白酶、DMEM 培养基、Trizol、逆转录酶Superscript Ⅲ为Invitrogen公司产品;优质胎牛血清,Gibco公司;HGF购自R&D, Agarose 、G418 由Sigma公司提供。PCR用酶SYBR Green PCR Master Mix购自ABI公司。EPICS AL TRA流式细胞仪,美国Beckman Coulter公司提供。
1.2 HEC2B细胞的体外培养与诱导
将细胞以1×105/cm2接种于细胞培养瓶中,每瓶加入5 mL含10%(φ)FBS(胎牛血清)的DMEM;培养24 h后,换5%FBS的DMEM饥饿培养12 h,分别加入浓度为20、40、60、80、100ng·mL-1的HGF进行处理,设置空白组不进行诱导,培养基中FBS的浓度改成5%;培养48 h后收集细胞。
1.3 PCR
用PBS清洗细胞,用Trizol法抽提RNA,并常规检测RNA的纯度及完整性。反转录,用人的βactin基因检测反转录是否成功。PCR条件为:94 ℃ 5 min 激活聚合酶,94 ℃变性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃45 s,共33循环,72 ℃保温10 min,4 ℃保温10 min。采用琼脂糖凝胶检测的方法进一步验证。Realtime定量PCR条件为:95 ℃ 5 min 激活聚合酶,95 ℃变性15 s,57 ℃退火5 s,72 ℃ 25 s,共45循环。采用ABI7300系统进行检测,每个循环结束检测荧光强度。融解曲线分析:每分钟读1次,检测范围为55 ℃ 到 95 ℃。荧光强度检测采用动态跟踪的方法,自动测出Ct值(每个反应管内的荧光信号到达所设定的域值时所经历的循环数),用2△△Ct 表示实验组目的基因的表达相对于对照组的变化倍数,并采用琼脂糖凝胶检测的方法进一步验证。Βactin引物序列如下:上游引物 5′gctct tttcc agcct tcctt3′,下游引物 5′ tgatc cacat ctgct ggaag3′。Cmet检测引物序列:上游引物5′ttcaagtagc caaagcgatg3′,下游引物 5′gtgtttacgtcaggataag3′ 。Cmet检测引物序列:上游引物5′ttcaagtagc caaagcgatg3′,下游引物 5′gtgtttacgtcaggataag3′,产物大小300 bp。
1.4 用MTT法检测细胞增殖能力
取对数生长期的细胞,用含0.25%(φ)胰酶消化,悬浮于适量培养基中,通过细胞计数将其浓度调整到4×104个细胞/mL。将此细胞悬液以100 μL/孔均匀接种到细胞培养板上,置于37 ℃,5%CO2的培养箱中,培养24 h后,换成稀释液,继续培养24 h,使细胞饥饿。分组加药,分别将含20、40、60、80、100 ng· mL-1HGF的培养液100 μL加入细胞培养孔中,每个稀释度做4个复孔,设立空白对照组。加样后置于37 ℃,5%CO2的培养箱中继续培养44 h,每孔加入20 μL MTT染色液,继续培养4 h;弃去培养液,加入抽提液150 μL/孔,置于微量振荡器张充分振匀以抽取染料,振动15 min。以570 nm为检测波长,630 nm为参考波长,用酶标仪测定各孔的吸光值(A)
1.5 流式细胞检测
消化并收集细胞,每检测管中(0.5~1)×106细胞,PBS清洗一遍,离心去上清,转速1 000 r/ min,5 min,沿管壁缓慢加入终浓度70%(φ)的乙醇,混匀,-20 ℃ 固定过夜,1 000 r/min 离心5 min去上清,PBS清洗一遍,加入Rnase抑制剂50 μL,加入50 μg/mL的PI染料混匀,4 ℃ 避光30 min,上机检测。
1.6 统计学方法
采用t检验,P<0.05 为差异有显著性。
2 结 果
2.1 HEC2B的培养与传代
HEC2B为起源于子宫内膜癌的细胞系,在10% 胎牛血清( Fetal Calf Serum, FCS),DMEM培养基,5% CO2,37℃的培养条件下,细胞生长良好,其形态见图1所示。
将上述总RNA逆转录后,采用PCR的方法进行扩增,电泳后进行EB染色(图3),发现得到条带的大小与预计的300 bp相符合,表明在HEC2B细胞中具有Cmet基因的转录。
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